Astral-DIA样本送样建议
1动物组织
①根据研究目的取特定位置组织，去除非研究所需的组织类型；考虑到可操作性，将组织分割成长宽高≤0.5cm的小块，可参考绿豆颗；
②用预冷PBS 或生理盐水清洗组织上的污渍，吸水纸吸干表面液体；
③处理好的组织分装入预冷的耐-192℃超低温螺纹口冻存管中，液氮速冻，-80℃长期保存（避免反复冻融），干冰运输。
2培养细胞
a.悬浮细胞
①培养基转移至离心管中，4℃ 400g-1000g离心5-10min，去上清；
②用预冷PBS 洗2-3 次，离心去上清；
③预冷的耐-192℃超低温螺纹口冻存管中，液氮速冻，-80℃长期保存（避免反复冻融），干冰运输。
b.贴壁细胞
① 去除培养基，用预冷PBS洗2-3次，去除残余培养基；
② 培养皿置于冰上，加入预冷PBS，用细胞刮将细胞刮于一侧，吸取至离心管中，4℃ 400g-1000g离心5-10min，去上清；
③ 预冷的耐-192℃超低温螺纹口冻存管中，液氮速冻，-80℃长期保存（避免反复冻融），干冰运输。
3 液体类
a. 血清
①收集全血样本至真空采血管中（红色头盖），上下轻轻颠倒5-10次；
②室温静置30min凝固分层，4℃ 1500-2000g离心10min；
③将上层血清转移至预冷离心管中；
④分装至预冷的耐-192℃超低温螺纹口冻存管，液氮速冻，-80℃长期保存（避免反复冻融），干冰运输。
c.血浆
①收集全血样本至EDTA抗凝管中（紫色头盖）；
②上下轻轻颠倒5-10次后，立即4℃ 1500-2000g离心10min；
③将上层血浆转移至预冷离心管中；
④分装至预冷的耐-192℃超低温螺纹口冻存管，液氮速冻，-80℃长期保存（避免反复冻融），干冰运输。
注意事项：
1）血清参考得率：30%~50%（例如：1mL全血大约能得0.3~0.5mL血清），血浆参考得率：约50%（例如：1mL 全血大约能得 0.5mL 血浆）；
2）分离血清血浆应严格按照操作说明进行，操作需在尽量短时间内完成（2h），避免出现溶血现象；
3）血清血浆样本中包含白蛋白等高丰度蛋白，会影响低丰度蛋白的检出；LabelFree和TMT项目需每样本去除高丰度蛋白，DIA可选择，方法使用ProteoMinerTM Protein Enrichment Kits (Bio-Rad)等试剂盒；
4）冷冻全血已不可用于血清/血浆分离。
红色头盖真空采血管 紫色头盖EDTA采血管
c. 脑脊液/淋巴液/关节液/胸水/腹水/灌洗液等
①收集液体样本，4℃ 1000-2000g离心5min；
②将上清分装至预冷的耐-192℃超低温螺纹口冻存管，液氮速冻，-80℃长期保存（避免反复冻融），干冰运输。
d.唾液
①取样前禁止进食、吸烟、嚼口香糖等2h以上，建议上午9:00-12:00取样，使用吐取法先在口腔中分泌唾液再吐于采集管中，重复至收集足量样本，4℃ 1000-2000g离心5min；
②将上清分装至预冷的耐-192℃超低温螺纹口冻存管，液氮速冻，-80℃长期保存（避免反复冻融），干冰运输。
e.泪液
①使用毛细管收集泪液于预冷离心管中，4℃ 8000-14000g离心5min；
②将上清分装至预冷的耐-192℃超低温螺纹口冻存管，液氮速冻，-80℃长期保存（避免反复冻融），干冰运输。
f. 尿液
①采集受试者晨起或晨间1h的中/后段“新鲜”尿液，于4℃临时保存 (不得超过8 h)，注意避免细菌污染，收集前注意对饮食的控制；4℃ 3000 g 离心 30min；
②将上清分装至预冷的耐-192℃超低温螺纹口冻存管，液氮速冻，-80℃长期保存（避免反复冻融），干冰运输。
g. 细胞上清
①收集前需更换为无血清培养基；对于贴壁细胞，先去除原有培养基，加入适当的 PBS/无血清培养基清洗细胞 1-2 次；对于悬浮细胞，4℃ 300g离心10 min 收集细胞，加入适当的 PBS/无血清培养基清洗细胞 1-2 次；
②继续加入无血清培养基培养一段时间，根据实验设计或细胞的生长状态确定时间收取上清；
③4°C 300g离心10 min，吸取上清；再4°C 3000g离心 10 min，确保将细胞或细胞碎片去除干净；
④将上清分装至预冷的耐-192℃超低温螺纹口冻存管，液氮速冻，-80℃长期保存（避免反复冻融），干冰运输。
4 植物组织
①根据研究目的取特定部位组织（如整株、根、茎、叶等，及蕨类和苔藓的其他组织），去除非目标组织，如组织过大/过小则根据需要进行分割或混样；
②处理好的组织迅速放入预冷的耐-192℃超低温螺纹口冻存管中或用锡箔纸包裹好，液氮速冻，-80℃长期保存（避免反复冻融），干冰运输。
注意事项：
1）所取样本如有污渍（如根），可用软毛刷和PBS清洗干净，并用吸水纸吸去表面液体；
2）不同个体需收集相同部位且生理状态相近的，如同一叶位、根生长位、花的展开程度、果实的颜色等；
3）较大的组织部位如需混样，送样前提前分割成小块混好；
4）成熟度较高的果实、或者含油脂、淀粉含量比较高的组织，建议加大送样量。
5 微生物和藻类
a. 大型真菌和藻类
①根据研究目的取特定部分（如真菌的菌盖、菌柄、孢子等，藻类叶状体、假根等），去除非目标组织，如组织过大/过小则根据需要进行分割或混样；
②处理好的组织迅速放入预冷的耐-192℃超低温螺纹口冻存管中或用锡箔纸包裹好，液氮速冻，-80℃长期保存（避免反复冻融），干冰运输。
b. 培养的真菌、细菌和微藻
①固体培养基培养时，可从培养基上刮取菌落，尽可能避免取到培养基；
②液体培养基培养时，通过离心收集菌体，并用PBS清洗1-2次；
③收集菌体转入预冷的耐-192℃超低温螺纹口冻存管中，液氮速冻，-80℃长期保存（避免反复冻融），干冰运输。
c. 真菌、细菌和微藻培养液
①根据研究目的培养一定时间后，离心收集上清，如有条件可用0.22μm过滤；
②分装入预冷的耐-192℃超低温螺纹口冻存管中，液氮速冻，-80℃长期保存（避免反复冻融），干冰运输。